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师兄
你这外泌体电镜图背景怎么这么脏?杂蛋白也太多了吧。
超速离心机排了两周才轮到我,好不容易提出来,粒径一测也不对。
小李
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师兄
样本量少才最头疼,超离那点产量,做一次下游实验就见底了。
这段对话,几乎是每个外泌体课题组的日常。血清干扰、杂蛋白污染、得率太低、样本类型不匹配……外泌体提取纯化问题五花八门,文献里的方法自己上手却未必管用。为更好服务大家开展外泌体研究,Umibio 针对不同样本类型,准备了一系列外泌体提取纯化试剂盒试用装,将预处理和提取纯化相结合,做差异化配方,最大程度帮老师们解决外泌体提取的困扰。覆盖细胞上清、血清/血浆、尿液、乳液、组织乃至细菌膜囊泡!不管你手上是哪种样本,先领一份试用装,用自己的样本亲自验一验,比看多少篇文献都靠谱。现点击下方图片,即可免费申请试用,轻松搞定外泌体提取纯化。
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文献数据可信赖,目前使用 Umbio 外泌体提取试剂盒发表的文献已有 800+ 篇。
外泌体提取纯化全流程避坑指南
一、预处理:先解决样本自带的「干扰源」
●细胞上清:源头尽量用无外泌体血清或无血清培养基;收集后尽早差速离心——300~800 g 10 min 去细胞,3,000 g 10 min 去碎片,10,000 g 10 min 去细胞器碎片。干细胞、神经细胞等分泌量低的样本,提取前可 3~5 倍浓缩。
●血清/血浆:若需排除血小板外泌体,选血浆;抗凝推荐 EDTA-2K,不用肝素,以免影响下游基因实验。溶血样本外泌体易降解,产量下降,慎用。
●组织/脂肪:新鲜组织及时液化处理后分离上清,可冻存;冻存组织块不建议。脂肪组织切小块后短期培养,让细胞把外泌体分泌到上清,再离心取上清,沉淀法富集。
●尿液/植物/牛奶/细菌:尿液主要防 Tamm-Horsfall 蛋白(THP),可通过调离子强度、pH 或还原剂解聚;植物采用低速离心 + 酶解 + 调 pH + 过滤,干品先泡发,多糖用酶解试剂去除;牛奶/母乳需去酪蛋白胶束,常用酸化至 pH 4.6、EDTA 或柠檬酸钠,EDTA 可提高纯度但可能改变蛋白谱与功能,建议预实验;细菌囊泡无通用方案,注意菌毛、鞭毛、噬菌体等共分离,尽量用 5 代内菌株、对数生长期,并做 3~5 倍超滤浓缩。
二、分离:选对方法,别只盯着超离
●磁珠法 vs 沉淀法:送测蛋白/脂质组学优先磁珠法。阴离子亲和磁珠通过电荷依赖结合外泌体,温和解离,完整度高、杂质低、去蛋白能力强,适合 WB 与组学研究。
●方法备选:除超速离心外,还可考虑沉淀法、磁珠法、阴离子交换色谱、切向流层析;提取后可接外泌体纯化滤柱(EPF 柱)去大囊泡和细菌,体积排阻色谱柱(SEC 柱)去小颗粒杂蛋白与游离核酸。
●重悬体积:20 mL 细胞上清一般用 200 μL PBS 重悬;想要更高浓度可适当少加。看不见沉淀属正常,重悬时把管底和侧壁都洗到。
●提高回收率:适量增加沉淀试剂用量,并适当延长静置时间——细胞上清不超过 16 h,血清/血浆等高浓度样本不超过 2 h,时间越长杂质也越多。
三、纯化:去杂蛋白、游离染料、游离核酸
●EPF 柱:0.22 μm,负责除菌、去大囊泡、游离核酸和部分杂蛋白。堵柱时可转 180 度再离心,或换新柱并适当延长离心时间;材料为PP,非无菌,使用前可紫外照射 30 min。
●SEC 柱:可去除 90% 以上杂蛋白,尤其小颗粒杂蛋白,外泌体综合回收率约 60%;过柱后可用 100 kD 超滤管进一步浓缩。它还能分离色素,外泌体先洗脱、色素后洗脱。
●染料去除:PKH26、PKH67、DiR 等脂溶性染料用沉淀法试剂盒去除;ACO520、ACO600、ACO800 等水溶性染料用超滤管去除。
●核酸/抗体去除:外泌体 miRNA/siRNA 电转后,游离核酸可用超滤或 SEC,一般选 SEC;纳米流式检测中未结合抗体,可用超离、超滤或 SEC,一般用超离。
四、保存:重悬、定量、冻存
●重悬:外泌体保存液不含蛋白,可直接重悬,使用前无需去除,体内外实验均无害无刺激;不可用双蒸水,以免囊泡涨破,建议用 PBS 或生理盐水。
●定量:保存液中的 DTT、EDTA、巯基乙醇等还原性物质会干扰 BCA 显色,导致浓度虚高,建议改用 Bradford 法。
●冻存:-80 ℃ 保存约一年;取出后冰上自然解冻,避免温度骤变损伤囊泡结构。
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内容策划:沈佳钰
内容审核:吴军
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